Intropica
Efecto de un carbón subbituminoso sobre el crecimiento y concentración de pigmentos de Dunaliella salina (Teodoresco, 1905) cultivada en fotobiorreactor de múltiples cámaras oscilantes
PDF

Palabras clave

Carbón subbituminoso
Dunaliella salina
pigmentos
fotobiorreactor.

Cómo citar

Gallego, E., Manjarrez, L., Herrera, L., & Leal, E. J. (2013). Efecto de un carbón subbituminoso sobre el crecimiento y concentración de pigmentos de Dunaliella salina (Teodoresco, 1905) cultivada en fotobiorreactor de múltiples cámaras oscilantes. Intropica, 8(1), 69–78. Recuperado a partir de https://revistas.unimagdalena.edu.co/index.php/intropica/article/view/741

Resumen

Se estudió el efecto de un carbón subbituminoso sobre el crecimiento y producción de pigmentos de Dunaliella salina cultivada en fotobiorreactor de múltiples cámaras oscilantes (FMCO) en condiciones de campo abierto. Se realizaron cinco tratamientos de CSM (10, 20, 30, 40, 50, 60 mg/L) y un control, cada uno por triplicado. El crecimiento poblacional se evaluó mediante conteo celular y el contenido de pigmentos se realizó mediante técnicas espectrofotométricas. Los resultados indicaron que el tratamiento de 20 mg/L de CSM produjo un mayor estímulo sobre el crecimiento de la microalga con 6.50 ± 0.77 x 106 cel.ml-1, tasa específica de crecimiento de (µ) 0.52 ± 0.03 div/día y tiempo de duplicación de (Td) de 1.33 ± 0.04 días. Así mismo, evidenció un mayor aumento en la concentración de clorofila y carotenoides totales por volumen de cultivo en la fase logarítmica, con 12.6 ± 0.26 y 0.50 ± 0.04mg/ml, respectivamente. Estas concentraciones presentaron una correlación significativa con la máxima densidad celular de D. salina en función de los tratamientos con el CSM con una rMDC, chla.tot= 0.918 y otra rMDC, carot.tot=0.919 a un nivel de significancia de p<0.01. El efecto positivo sobre el crecimiento de la cepa se explica probablemente por las propiedades físicas y químicas del material carbonoso. Los resultados demostraron la factibilidad de utilizar este carbón como un substrato apropiado para el crecimiento de la microalga, siendo una alternativa innovadora y menos costosa para la obtención de importantes metabolitos.  
PDF

Citas

Abalde, J., A. Cid, P. Fidalgo, E. Torres y C. Herrero. 1995. Microalgas: Cultivo y Aplicaciones. Ediciones Universidad de La Coruña, España. 26-210 pp.

Amaro, H., C. Guedes y X. Malcata. 2011. Advances and perspectives in using microalgae to produce biodiesel. Applied Energy. 4(12): 1-9.

Andrade, Ch., A. Vera, C. Cardenas y E. Morales. 2009. Producción de biomasa de la microalga Scenedesmus sp. utilizando aguas residuales de pescadería. Revista Técnica de la Facultad de Ingeniería Universidad del Zulia. 32(2):126-134.

Angulo, R., J. Maury y F. Bernal. 2005. Extracción e hinchamiento de carbones del Caribe colombiano en diferentes solventes a temperatura ambiente. Dugandia 1: 129-141.

Arteca, R. 1996. Plant Growth Substances: Principles and Applications. Eds. Chapmann & Hall. New York City. 5-11 pp.

Ben-Amotz, A. y M. Avron. 1983. On the factors which determine massive β -Carotene accumulation in the halo-tolerant alga Dunaliella bardawil. Plant Phisiologic. 72: 593 – 597.

Borowitzka, M. 1988. Algal growth media and sources of algal cultures. pp 456-465. En: Borowitzka M. y L. Borowitzka. (Ed). Microalgal Biotechnology. Cambridge University Press, Cambridge. 680p.

Borowitzka, M. y L. Borowitzka. 1988. Dunaliella. pp 27-58. En: Borowitzka MA y LJ Borowitzka (eds.) Microalgal Biotechnology. Cambridge University Press, Cambridge. 680 p.

Cifuentes, A., M. González, O. Parra y M. Zúñiga. 1996. Cultivo de cepas de Dunaliella salina (Teodoresco 1905) en diferentes medios bajo condiciones de laboratorio. Revista Chilena de Historia Natural. 69: 105-112.

Colpas, F., R. Angulo, R. Fernández, M. Palencia y L. Rodríguez, 2000. Obtención y caracterización de fertilizantes nitrogenados a partir de carbones de bajo rango procedentes de Montelíbano (Córdoba). Grupo de Carboquímica. Memorias: V Congreso Nacional de Ciencia y Tecnología del Carbón. 1: 123-140.

Contreras, C., J. Peña, L. Flores y R. Cañizares. 2003. Avances en el diseño conceptual de fotobiorreactores para el cultivo de microalgas. Interciencia. 28(8): 450-456.

Chini, Z., R. Pastorelli y M.Tredici, 2000. A Modular Flat Panel Photobioreactor (MFPP) for indoor mass cultivation of Nannochloropsis sp. under artificial illumination. Journal of Applied Phycology. 12(3-5): 521-526.

Chisti, Y. 2007. Biodiesel from microalgae. Biotechnology Advances. 25: 294–30.

Dipak, P. y S. Lele. 2005. Carotenoid production from microalga, Dunaliella salina. Indian Journal of Biotechnology. 4(8): 476-483.

Fachini, A. y M. Vasconcelos. 2006. Effects of zeolites on cultures of marine microalgae. Environmental Science and Pollution Research. 13(6): 361-446 p.

Fakowski, P. 1980. Light-shade adaptation in marine phytoplankton. Journal Plant Physiologycal. 66(4): 592-595.

Fernández, B., G. Dragoner y J. Teixeira. 2010. Light regime characterization in airlift of photobioreactor for production of microalgae with high starch content. Applied Biochemical an Biotechnology. 61: 218–226.

Gallego E., S. Suarez, E. Leal y C. Vargas. 2005. Estudio de un carbón subbituminoso como promotor de crecimiento de Dunaliella salina (Teodoresco, 1905). Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas 17: 13-70.

Gallego, E., E. Leal y C. Vargas. 2007. Posible mecanismo de interacción entre el carbón subbituminoso y la solución del medio nutriente para el crecimiento de Dunaniela salina (Teodoresco, 1905). Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas 19: 1-46.

Gavrilescu, M. y Y. Chisti. 2005. Biotechnology -a sustainable alternative for chemical industry-. Biotechnology Advances 23: 471–499.

Ginzburg, M. 1988. Dunaliella: a green alga adapted to salt. Advances in Botanical Research 14:93-183.

Gómez, L. M. 1997. Cultivo y aplicación de las microalgas Dunaliella salina y Chlorella vulgaris en Cuba. Tesis doctoral. España: Facultad de Ciencias, Universidad de La Coruña. 175 p.

Gómez, G. 2000. Efecto del carbón Montelíbano sobre el crecimiento de Dunaliella salina. Tesis de grado. Universidad del Atlántico, Barranquilla, Colombia. 86 p.

Guedes, A., H. Amaro y F. Malcata. 2011. Microalgae as Sources of Carotenoids. Marines Drugs 9(1): 625-644.

Guevara, M., C. Lodeiros, O. Gómez, N. Lemus, P. Núñez, L. Romero, A. Vásquez y N. Rosales. 2005. Carotenogénesis de cinco cepas del alga Dunaliella sp. (Chlorophyceae) aisladas de lagunas hipersalinas de Venezuela. Revista Biología Tropical. 53(3-4): 331-337.

Guillard, R. 1973. Division rates. pp 289-312. En: Stein, J. R. (Ed), Handbook of Phycological Methods, Culture Methods and Growth Measurements. Cambridge University Press, Cambridge, 423 p.

Hayes, M. y C. Graham, 2000. Procedures for the Isolation and Fractionation of Humic Substances. pp 106-110 En: E.A. Ghabbour and G. Davies. (Ed). Humic Substances: Versatile Components of Plants, Soil and Water. Royal Society of Chemistry, Cambridge, UK. 390 p.

Jeffrey, S. y G. Humphrey. 1975. New spectrophotometric equations for determining chlorphylls a, d, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton. Biochemical Physiology Pflanzen 167:191-194.

Jezequiel, M., M. Hildebrand y M. Brzezinski. 2000. Silicon metabolism in diatoms: implications for growth. Journal of Phycology 36(5):821–40.

Leal, E. y J. Mancilla. 2001. Diseño y construcción un fotobiorreactor cerrado para la producción intensiva de microalgas. Trabajo de grado. Facultad de ingeniería. Universidad del Atlántico, Barranquilla. 120 p.

Leal, S., R. Nodar, G. Delgado y Y. Almaguer. 2004. Efecto de cinco tipos de productos zeolíticos sobre el crecimiento de la microalga marina Nannochloropsis gaditana. Revista de investigaciones marinas 25(3): 242-244.

Luque, M, L. Almanza, E. Leal y C. Vargas, 2008. Influencia del carbón subbituminoso sobre el crecimiento de Dunaliella salina en un medio de cultivo no convencional a gran escala. Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas 19: 13-46.

Mendiola, L.J.A. 2007. Extracción de compuestos bioactivos de microalgas mediante fluidos supercríticos. Tesis Doctoral, Universidad Autónoma de Madrid, España. 39 p.

Mimouni, V., L. Ulmann, V. Pasquet, M. Mathieu, L. Picot, G. Bougaran, J.P. Cadoret, A. Morant y B. Schoefs. 2012. The potential of microalgae for the production of bioactive molecules of pharmaceutical interest. Current Pharmaceutical Biotechnology. 13(15): 2733-2750.

Montero, L., R. Angulo, I. Mejía y M. Peralta. 1998. Remoción de metales pesados mediante carbones sulfonados. Grupo de Investigación del Carbón (GIC) Departamento de Ingeniería Química. Universidad del Atlántico. En: Memorias: V Congreso Nacional de Ciencia y Tecnología del Carbón. Universidad de Cartagena. Cartagena, Colombia. 24 p.

Moreno J. y V. Albarracín. 2012. Aislamiento, cultivo e identificación de microorganismos ambientales a partir de muestras naturales. Reduca (Biología) 5(5): 79-93.

Nieves, S. 2000. Efecto de productos de naturaleza zeolítica sobre el crecimiento y la calidad dietética de microalgas para la acuicultura. Tesis de doctorado, Universidad de Colima, México. 8-123 p.

Niels, E. 2008. The technology of microalgal culturing. Journal Biotechnology Letters 30:1525–1536.

Nishibori, N., M. Niitsu, S. Fujihara, T. Sagara, S. Nishio y I. Imai. 2009. Occurrence of the polyamines caldopentamine and homocaldopentamine in axenic cultures of the red tide flagellates Chattonella antiqua and Heterosigma akashiwo (Raphidophyceae). FEMS Microbiology Letters. 298:74-78.

Norsker, N., M. Barbosa, M. Vermüe y R. Wijffels. 2011. Microalgal production: A close look at the economics. Biotechnology Advances 29(1): 24-27.

Ortiz, M., C. Cortés, J. Sánchez, J. Padilla y A. Otero. 2012. Evaluación del crecimiento de la microalga Chlorella sorokiniana en diferentes medios de cultivo en condiciones autotróficas y mixotróficas. Orinoquia. 16(1): 11-20.

Perumal, P. y P. Subramanian. 1989. Photosynthetic pigments and humic acids in tropical coastal board ecosystems. Revista Ciencias Marinas 15(2): 67-77.

Pouneva, I.D. 2005. Effect of humic substances on the growth of microalgal cultures. Journal of Plant Physiology 52(3): 410- 413.

Priyadarshani, I. y B. Rath. 2012. Commercial and industrial applications of micro algae: A review. Journal of Algal Biomass Utilization 3(4): 89-100.

Serpa, R. y A. Calderón. 2006. Effect of different nitrogen sources on the carotenoid and chlorophyll content of four peruvian strains of Dunaliella salina Teodoresco. Ecología Aplicada 5(1-2): 93-99.

Sharif, M., R. Khattak y M. Sarir. 2002. Effect of lignitic coal derived humic acid on growth and yield of wheat and maize in alkaline soil. Tesis Doctoral. Universidad de Peshawar. Facultad de Ciencias en Producción de Cultivos. 156 p.

Strickland, J. y .R. Parsons. 1972. Capítulo IV: Pigment analysis spectrophotometric determination of Chlorophylls and total carotenoids, pp 185-190. En: A Practical Handbook of Seawater Analysis Fisheries Research Board of Canada. Segunda Edición. Otawa. 310 p.

Sun, B., Y. Tanji y H. Unno. 2005. Influences of iron and humic acid on the growth of the cyanobacterium Anabaena circinalis. Biochemical Engineering Journal 24(5):195–201.

Tarakhovskaya, E., Maslov Y. y M. Shishova. 2007. Phytohormones in Algae. Journal of Plant Physiology 54(2): 186–194.

Venkatesan, S., M. Senthil, Ch. Senthil, S. Bashkar y R. Rengasamy. 2013. Culturing marine green microalgae Dunaliella salina Teod. and Dunaliella tertiolecta Masjuk in Dewalne’s Medium for valuable feeds stock. Journal of modern biotechnology 2(2): 40-45.

Wegmann, K. y H. Metzner, 1971. Synchronization of Dunaliella salina cultures. Archiv für Mikrobiologie 78: 360-367.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.