Identificación molecular de Contracaecum jorgei (Nematoda: Anisakidae) en la Ciénaga Grande de Santa Marta, Colombia
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Resumen
Los nematodos parásitos del género Contracaecum (Anisakidae) presentan una creciente relevancia ecológica y sanitaria en la Ciénaga Grande de Santa Marta (CGSM), debido a su presencia en peces de consumo humano, como el róbalo Centropomus undecimalis. La identificación morfológica de estos parásitos resulta compleja dada la alta similitud entre especies, por lo que los marcadores moleculares constituyen herramientas clave para su diferenciación. Este estudio reporta por primera vez la presencia de Contracaecum jorgei en la CGSM y aporta las primeras secuencias de la especie para Colombia. Se examinaron 15 individuos de C. undecimalis, de los cuales se aislaron cuatro parásitos, y tras la amplificación y secuenciación del gen COII se identificó a C. jorgei con una similitud del 99,09 %–99,81 %. Los análisis filogenéticos confirmaron esta identificación al agrupar las secuencias obtenidas con otras de C. jorgei, con un valor de soporte bootstrap del 97 %, mientras que el análisis de distancias genéticas evidenció un barcode gap entre especies, con un umbral de diferenciación del 3 %. Este trabajo constituye la primera identificación molecular de C. jorgei en la CGSM y confirma la utilidad del gen COII para la delimitación de especies dentro del género Contracaecum, destacando además la importancia de integrar marcadores nucleares que permitan fortalecer la identificación de estos nematodos.
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Citas
Abdelsalam, M., Attia, M. M., y Mahmoud, M. A. (2020). Comparative morphomolecular identification and pathological changes associated with Anisakis simplex larvae (Nematoda: Anisakidae) infecting native and imported chub mackerel (Scomber japonicus) in Egypt. Regional Studies in Marine Science, 39, 101469. https://doi.org/10.1016/j.rsma.2020.101469
Alonso García, A., Álvarez Satta, M., González Filgueira, L., y Gutiérrez Díez, I. (2009). Biología general de Anisakis sp. Universidade de Vigo. http://revbigo.webs.uvigo.es/images/revbigo/2009/Revbigo_2009_06.pdf
Audicana, M. T., Ansotegui, I. J., de Corres, L. F., y Kennedy, M. W. (2002). Anisakis simplex: Dangerous—dead and alive? Trends in Parasitology, 18(1), 20–25. https://doi.org/10.1016/S1471-4922(01)02152-3
Baird, F. J., Gasser, R. B., Jabbar, A., y Lopata, A. L. (2014). Foodborne anisakiasis and allergy. Molecular and Cellular Probes, 28(4), 167–174. https://doi.org/10.1016/j.mcp.2014.02.006
Cardoso, C. M., Maluf, A., Moreno, B. B., Nobre, C. R., Maranho, L. A., Handan, B. A., Souza Abessa, D. M., Seabra Pereira, C. D., y Ribeiro, D. A. (2019). Common snook juveniles (Centropomus undecimalis) as biomonitor organisms to evaluate cytogenotoxicity effects of surface estuarine water from Southern Brazil. Marine Pollution Bulletin, 149, 110513. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2019.110513
Cavallero, S., Paggi, L., Mattiucci, S., D’Amelio, S., Dailey, M., Webb, S. C., y Bullini, L. (2012). Molecular identification of Anisakis spp. from fishes from edible markets in Southern Brazil. Molecular and Biochemical Parasitology, 183(2), 69–74. https://doi.org/10.1016/j.molbiopara.2012.01.004
D’Amelio, S., Mathiopoulos, K. D., Santos, C. P., Pugachev, O. N., Webb, S. C., y Paggi, L. (2000). Genetic markers in ribosomal DNA for the identification of members of the genus Anisakis (Nematoda: Ascaridoidea) defined by polymerase-chain-reaction-based restriction fragment length polymorphism. International Journal for Parasitology, 30(2), 223–226. https://doi.org/10.1016/S0020-7519(99)00178-2
Duarte, R., Martinatti, B. R., de Lima, V. M., Tubino, R. A., Oliveira, M. S., Berto, B. P., y Santos-Clapp, M. D. (2025). Contracaecum jorgei in common snooks in Brazil: New host, locality record and remarks on misidentifications of Contracaecum spp. in GenBank. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 97(1), e20240332. https://doi.org/10.1590/0001-3765202520240332
Funk, D. J., y Omland, K. E. (2003). Species-level paraphyly and polyphyly: Frequency, causes, and consequences, with insights from animal mitochondrial DNA. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics, 34, 397–423. https://doi.org/10.1146/annurev.ecolsys.34.011802.132421
Garbin, L., Mattiucci, S., Paoletti, M., González-Acuña, D., y Nascetti, G. (2011). Genetic and morphological evidences for the existence of a new species of Contracaecum (Nematoda: Anisakidae) parasite of Phalacrocorax brasilianus (Gmelin) from Chile and its genetic relationships with congeners from fish-eating birds. Journal of Parasitology, 97(3), 476–492. https://doi.org/10.1645/GE-2642.1
González-Arteaga, M., y Ricaurte-Villota, C. (2023). Dinámica morfológica reciente de la boca de la Ciénaga Grande de Santa Marta: evolución, tendencias y causas. Boletín de Investigaciones Marinas y Costeras, 52(1), 45-64. https://doi.org/10.25268/bimc.invemar.2023.52.1.1140
González-Amores, y., Clavijo-Frutos, E., Salas-Casanova, C., y Alcain-Martínez, G. (2015). Direct parasitological diagnosis of infection with Hysterothylacium aduncum in a patient with epigastralgia. Revista Española de Enfermedades Digestivas, 107(11), 699–700. http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttextypid=S1130-01082015001100009
Hall, T. A. (1999). BioEdit: A user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series, 41, 95–98.
Hebert, P. D. N., Cywinska, A., Ball, S. L., y deWaard, J. R. (2003a). Biological identifications through DNA barcodes. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 270(1512), 313–321. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2218
Hebert, P. D. N., Ratnasingham, S., y deWaard, J. R. (2003b). Barcoding animal life: Cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related species. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 270(Suppl 1), S96–S99. https://doi.org/10.1098/rsbl.2003.0025
Hoang, D. T., Chernomor, O., von Haeseler, A., Minh, B. Q., y Vinh, L. S. (2018). UFBoot2: Improving the ultrafast bootstrap approximation. Molecular Biology and Evolution, 35(2), 518–522. https://doi.org/10.1093/molbev/msx281
Kalya anamoorthy, S., Minh, B. Q., Wong, T. K. F., von Haeseler, A., y Jermiin, L. S. (2017). ModelFinder: Fast model selection for accurate phylogenetic estimates. Nature Methods, 14, 587–589. https://doi.org/10.1038/nmeth.4285
Kumar, S., Stecher, G., Suleski, M., Sanderford, M., Sharma, S., y TNadleramura, K. (2024). MEGA12: Molecular Evolutionary Genetic Analysis Version 12 for Adaptive and Green Computing. Molecular Biology and Evolution, 41(12), msae263. https://doi.org/10.1093/molbev/msae263
Larsson, A. (2014). AliView: A fast and lightweight alignment viewer and editor for large data sets. Bioinformatics, 30(22), 3276–3278. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu531
Lea-Charris, E., Castro, L. R., y Villamizar, N. (2021). DNA barcoding reveals fraud in commercial common snook (Centropomus undecimalis) products in Santa Marta, Colombia. Heliyon, 7(5), e07095. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e07095
Liu, J., Jiang, J., Song, S., Tornabene, L., Chabarria, R., Naylor, G. J. P., y Li, C. (2017). Multilocus DNA barcoding – Species identification with multilocus data. Scientific Reports, 7, 16601. https://doi.org/10.1038/s41598-017-16920-2
Mattiucci, S., y Nascetti, G. (2008). Advances in the molecular systematics of anisakid nematodes, with implications for their evolutionary ecology and host–parasite coevolutionary processes. Advances in Parasitology, 66, 47–148. https://doi.org/10.1016/S0065-308X(08)00202-1
Mattiucci, S., Nascetti, G., Cianchi, R., Paggi, L., Arduino, P., Margolis, L., Brattey, J., Webb, S. C., D’Amelio, S., Orecchia, P., y Bullini, L. (1997). Genetic and ecological data on the Anisakis simplex complex, with evidence for a new species (Nematoda, Ascaridoidea, Anisakidae). Journal of Parasitology, 83(3), 401–416. https://doi.org/10.2307/3284402
Mattiucci, S., Paoletti, M., Olivero-Verbel, J., Baldiris, R., Arroyo-Salgado, B., Garbin, L., ... y Nascetti, G. (2008). Contracaecum bioccai n. sp. from the brown pelican Pelecanus occidentalis (L.) in Colombia (Nematoda: Anisakidae): morphology, molecular evidence and its genetic relationship with congeners from fish-eating birds. Systematic Parasitology, 69, 101–121. https://doi.org/10.1007/s11230-007-9116-4
Moreno, L. T. (2018). La pesca e los pescadores artesanales en Colombia. PEGADA-A Revista da Geografia do Trabalho, 19(2).
MSD Manuals. (2025). Ciclo vital de Anisakis. https://www.msdmanuals.com/es/professional/multimedia/image/ciclo-vital-de-anisakis
Nadler, S. A., y Pérez-Ponce de León, G. (2011). Integrating molecular and morphological approaches for characterizing parasite cryptic species: Implications for parasitology. Parasitology, 138(13), 1688–1709. https://doi.org/10.1017/S003118201000168Xpa
National Center for Biotechnology Information (NCBI). (2025). Accession No. PX127524, Contracaecum jorgei isolate Rhambdia cytochrome oxidase subunit II (cox2) gene, partial cds; mitochondrial; [citado: 2025-enero-13]. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/PX127524
Olivero-Verbel, J., Baldiris-Ávila, R., Arroyo-Salgado, B., Mercado-Camargo, J., y Güette-Fernández, J. (2005). Nematode infection in Mugil incilis from Cartagena Bay and Totumo marsh, northern Colombia. Journal of Parasitology, 91(5), 1109–1112. https://doi.org/10.1645/GE-2642.1
Patiño, J. A., y Olivera, M. J. (2019). Anisakiasis gastroalérgica: primera descripción de un caso en Colombia y revisión bibliográfica. Biomédica, 39(2), 241–246. https://doi.org/10.7705/biomedica.4578
Pardo, S. C., Mejía, K. P., Navarro, Y. V., y Atencio, V. G. (2007). Prevalencia y abundancia de Contracaecum sp. en rubio Salminus affinis en el río Sinú y San Jorge: descripción morfológica. Revista MVZ Córdoba, 12(1), 887–896. https://doi.org/10.21897/rmvz.433
Posit Team. (2024). RStudio: Integrated Development Environment for R. Posit Software, PBC. https://posit.co/download/rstudio-desktop/
Sardella, C. J., Mancini, M., Salinas, V., Simões, R. O., y Luque, J. L. (2020). A new species of Contracaecum (Nematoda: Anisakidae) found parasitizing Nannopterum brasilianus (Suliformes: Phalacrocoracidae) and Hoplias argentinensis (Characiformes: Erythrinidae) in South America: morphological and molecular characterization of larval and adult stages. Journal of Helminthology, 94, e184. https://doi.org/10.1017/S0022149X20000644
Trifinopoulos, J., Nguyen, L. T., von Haeseler, A., y Minh, B. Q. (2016). W-IQ-TREE: A fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis. Nucleic Acids Research, 44(W1), W232–W235. https://doi.org/10.1093/nar/gkw256
Tringali, M. D., y Bert, T. M. (1996). The genetic stock structure of common snook (Centropomus undecimalis). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 53(5), 974–984. https://doi.org/10.1139/f96-027
Tuemmers, C., Nuñez, C., Willgert, K., y Serri, M. (2014). Anisakiasis y difilobotriasis: Ictiozoonosis de riesgo para la salud pública asociada al consumo del pescado crudo en Chile. Revista de la Universidad del Zulia, 5(11), 27–39.
Yagi, K., Nagasawa, K., Ishikura, H., Nakagawa, A., Sato, N., Kikuchi, K., y Ishikura, H. (1996). Female worm Hysterothylacium aduncum excreted from human: A case report. Japanese Journal of Parasitology, 45(1), 12–23.
Yu, J.-R., Seo, M., Kim, Y.-W., Oh, M.-H., y Sohn, W.-M. (2001). A human case of gastric infection by Pseudoterranova decipiens larva. The Korean Journal of Parasitology, 39(2), 193–196. https://doi.org/10.3347/kjp.2001.39.2.193